DiIC18(3)-DS 細胞膜橙紅色熒光探針

【溫馨提示】：見我司整理的細胞膜熒光探針（Tracers for Membrane Labeling）產品專題 。

產品簡介：

 DiIC18(3)-DS是DiI（DiIC18(3), Cat#：NBS5129）的磺酸化衍生物，具有更好的水溶性，且在固定和透化處理后能維持良好的染色狀態。

DiIC18(3)-DS是橙色熒光和親脂性碳菁類染料-DiI（DiIC18(3)）的類似物，英文全名：1,1'-Dioctadecyl-3,3,3',3'- Tetramethylindocarbocyanine-5,5'-Disulfonic Acid，包含磺酸基團以改進探針的水溶性。在水中呈弱熒光，插入膜內則呈強熒光且相當穩定。在脂質環境內具極其高的摩爾吸光系數和短的激發態壽命（~1ns）。一旦進入細胞后，在細胞內質膜中逐步擴散，于最佳濃度條件下可將整個細胞均勻染色。

保存條件: 

-20oC干燥避光保存，有效期至少一年。

產品使用：

【注意】以下使用方法僅用作參考，可根據具體的實驗條件做出調整。

1. 染色液制備

1）儲存液制備：用DMSO配置濃度1～5 mM的儲存液。例如，取5mgDiIC18(3)-DS（Mw：993.53g/mol）溶于1ml無水DMSO中，充分溶解，即得到5mM的儲存液。【注意】未使用的儲存液根據單次用量分裝儲存在-20℃，避免反復凍融。

2）工作液制備：用合適的緩沖液（如：無血清培養基，HBSS或PBS）稀釋儲存液，調整到1～5 μM的工作濃度。【注意】工作液最終濃度需要根據不同細胞系和實驗體系來優化。建議從推薦濃度開始，以10倍范圍為區間進行最優濃度的摸索。

2.懸浮細胞染色

1）加入適當體積的染色工作液重懸細胞，使其密度為1×10⁶/mL。

2）37℃孵育細胞2～20min，不同的細胞最佳培養時間不同。可以20min作為起始孵育時間，之后優化以保證得到均一化的標記結果。

3）孵育結束，按1000～1500 rpm離心5min。

4）去除上清液，之后輕柔加入37℃預熱的生長培養液重懸細胞。

5）再重復3），4）步驟兩次。

3.貼壁細胞染色

1）將貼壁細胞培養于無菌蓋玻片上。

2）從培養基中移走蓋玻片，濾掉過量培養液，將蓋玻片放在潮濕的小室內。

3）在蓋玻片的一角加入100μL的染色工作液，輕輕晃動使染料均勻覆蓋所有細胞。

4）37℃孵育細胞2～20min，不同的細胞最佳培養時間不同。可以20min作為起始孵育時間，之后優化以保證得到均一化的標記結果。

5）吸掉染色工作液，用培養液洗蓋玻片2～3次，每次用預溫的培養基覆蓋所有細胞，孵育5～10min，然后吸走培養基。

4.顯微鏡檢測

1）DiD，DiO，DiI，DiR和DiA濾光器的選擇參見下表：

2）多色染料的同時檢測，濾光器按照以下設定：

a)DiI和DiO＝OmegaXF52，Chroma51004；

b)DiI和DiD＝OmegaXF92，Chroma51007；

c)DiI，DiO和DiD＝OmegaXF93，Chroma61005；

5.流式細胞儀檢測

經DiO，DiI，DiD和DiR染色的細胞分別用流式細胞儀的FL1，FL2，FL3或FL4通道檢測。

注意事項：

1.      經碳菁類染料（比如DiR）染色后的細胞能用多聚甲醛（PFA）固定，但不能用甲醇或其他溶劑的固定劑。染色能承受0.1% Triton X-100或0.1%毛地黃皂苷的透化處理，但會明顯增強胞內染色。

2.      經碳菁類染料（比如DiR）染色后的細胞不建議使用封片劑，因封片劑內的甘油或有機溶劑會溶解染料，引起增加的胞內染色和隨時間增加的高背景。建議直接在PBS或其他生理緩沖液內成像。使用PBS直接蓋上蓋玻片，然后四周用指甲油密封。

3.      熒光染料均存在淬滅問題，請盡量注意避光，以減緩熒光淬滅。

4.      為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

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