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<ET10008/ET12008/ET15008 > ACE FuturePAGE? 蛋白預(yù)制膠8%

欄目:蛋白預(yù)制膠
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本產(chǎn)品為聚丙烯酰胺電泳凝膠,用于蛋白質(zhì)分離,單片膠為 10孔、12 孔或 15孔,10孔膠每孔最大上樣量為 70μL,推薦上樣量 35μL以下; 12孔膠每孔最大上樣量為 50μL,推薦上樣量 25μL以下;15孔膠每孔 最大上樣量為 30μL,推薦上樣量 15μL以下; 采用全自動凝膠灌注技術(shù),產(chǎn)品的重復(fù)性好,質(zhì)量穩(wěn)定。獨特的凝膠緩 沖配方使蛋白電泳條帶更為清晰銳利,更加均勻,分辨率更高;配套緩沖液為中性緩沖液,可以提高凝膠穩(wěn)定性和避免蛋白在電泳過程中的再修飾。


FuturePAGE? 蛋白預(yù)制膠8%


產(chǎn)品線

產(chǎn)品目錄名稱

規(guī)格

貨號

目錄價

蛋白電泳

FuturePAGE? 8% 10 Wells

10 PCs/Box

ET10008Gel

150

25 PCs/Box

ET10008LGel

325

FuturePAGE? 8% 12 Wells

10 PCs/Box

ET12008Gel

150

25 PCs/Box

ET12008LGel

325

FuturePAGE? 8% 15 Wells

10 PCs/Box

ET15008Gel

150

25 PCs/Box

ET15008LGel

325


產(chǎn)品介紹

本產(chǎn)品為聚丙烯酰胺電泳凝膠,用于蛋白質(zhì)分離,單片膠為 10孔、12 孔或 15孔,10孔膠每孔最大上樣量為 70μL,推薦上樣量 35μL以下; 12孔膠每孔最大上樣量為 50μL,推薦上樣量 25μL以下;15孔膠每孔 最大上樣量為 30μL,推薦上樣量 15μL以下;采用全自動凝膠灌注技術(shù),產(chǎn)品的重復(fù)性好,質(zhì)量穩(wěn)定。獨特的凝膠緩 沖配方使蛋白電泳條帶更為清晰銳利,更加均勻,分辨率更高;配套緩沖液為中性緩沖液,可以提高凝膠穩(wěn)定性和避免蛋白在電泳過程中的再修飾。


預(yù)制膠使用簡介

① 緩沖液準(zhǔn)備:取出一包 MOPS-SDS Running Buffer溶解于1L去離子水中。

起,使梳齒與凝膠輕微分離。

② 將預(yù)制膠從包裝袋中取出,并撕去膠板底部的金色膠條。

③ 按左右中的順序,分別將梳子的左側(cè),右側(cè)和中間部分,少許向上提少許向上提起,使梳齒與凝膠輕微分離。

④ 最后按箭頭方向?qū)⑹嶙訌哪z板中平穩(wěn)地平行推出。

⑤ 推出梳子時,盡量避免孔道內(nèi)有殘留液體。

⑥ Bio-Rad、WIX等品牌硅膠密封條凸起的電泳槽的使用注意事項:將電泳槽內(nèi)框架的綠色硅膠密封條取出,然后將其平坦的一面朝外并重新插回內(nèi)框架的凹槽中。

⑦ 裝膠。

⑧ 向電泳槽的內(nèi)槽中倒入足夠的 MOPS-SDS Running Buffer,使其覆蓋 上樣孔 5-7 mm,在外槽中加入相同的電泳緩沖液以確保適當(dāng)?shù)睦鋮s。為 了獲得最好的效果,外槽的緩沖液需要比內(nèi)槽的位置稍低,不可漫過膠板。使用注射器或其他工具吸取適量 1×的電泳緩沖液,將上樣孔輕輕沖洗干凈,去除氣泡和殘留的儲存緩沖液。將蛋白質(zhì)樣品上樣、電泳。推薦電壓為160V,最高不超過180V。

    注意:Tris-Glycine電泳緩沖液與 FuturePAGETM蛋白預(yù)制膠的緩沖系統(tǒng)不兼容, 請不要使用。

⑨ 從膠板中取出凝膠。

a 電泳結(jié)束后,從電泳槽中將膠板取出。

b 將合適的撬具小心插入膠板之間的空隙中。

c 按照圖中所示方法慢慢撬動膠板上、中、下三個位置,直至膠板兩側(cè)完全分開。

d 膠板打開之后,凝膠可能粘在任意一側(cè),將有凝膠的膠板有膠一側(cè)浸入水中,貼著水面,膠板傾斜輕輕提起,凝膠掉入水中后,將凝膠從水中取出 進行后續(xù)實驗。