NoninBio?基質膠使用指南
Part I 基質膠——常識篇
1 、基質膠分類?
基質膠主要分為 5 大類(表 1),分別為標準型(Standard, STD)、細胞因子減少型(Growth Factor Reduced, GFR) 、高濃度型(High Concentration, HC) 、類器官專用型(Organoid)和干細胞專用 型(Embryonic Stem Cell, ESC)。
2 、應該采購哪一款的基質膠?
2. 1 標準型基質膠適用于適用于極化細胞的培養(yǎng),如上皮細胞。促進多種類型細胞的分化, 包括肝細胞、神經(jīng)元、β-胰島細胞、乳腺上皮細胞、內(nèi)皮細胞和平滑肌細胞。例如侵襲實驗、 成管實驗等。
2.2 細胞因子減少型基質膠適用要求基質膠成分相對明確的實驗,例如類器官培養(yǎng)、血管生 成、干細胞培養(yǎng)等。
2.3 高濃度型基質膠適用于體內(nèi)成瘤(CDX 、PDX)和體內(nèi)血管生成(Plug Assay)等。高濃度基 質膠成膠速度快,凝膠剛性高,具有更好的支架效果(Cell Scaffold)。
2.4 類器官專用型基質膠屬于細胞因子減少型亞類,有較高濃度和剛性,且通過小鼠小腸類 器官培養(yǎng)測試,能再現(xiàn)小腸類器官出芽表型和分子標志物表達特征。
2.5 胚胎干細胞專用型基質膠是經(jīng)驗證具有特定培養(yǎng)基兼容性,且穩(wěn)定維持干細胞形狀和干 性的基質膠。
表 1 基質膠分類和應用場景
標準型 Standard | 生長因子減少 | 高濃度 HC | 類 器 官 專 用 Organoid | 干 細 胞 專 用 Stem cell | |
應 用 場 景 | 適用于極化細胞的培養(yǎng), | 適用需要成分相明確的基底 | 高濃度基質膠凝膠 后具有更高的剛度 和支架完整性。適 合體內(nèi)細胞運輸應 用,可改善細胞植 入效果并促進實體 瘤形成。 | 精選適合類器官培 養(yǎng)基質膠(濃度、剛度)。 | 經(jīng)驗證具有特定培養(yǎng) |
來 源 | 小鼠肉瘤 | ||||
蛋白濃度 | 8-12 mg/ml | 8-12 mg/ml | 16-22 mg/ml | 8-12 mg/ml | 8-12 mg/ml |
保 質 期 | 從生產(chǎn)時期計時,2年 | ||||
貨 號 | NBJ6234-5ml(含酚紅) NBJ6234-10ml(含酚紅) NBJ6237-5ml(無酚紅) NBJ6237-10ml(無酚紅) | NBJ6230-5ml(含酚紅) NBJ6230-10ml(含酚紅) NBJ6231-5ml(無酚紅) NBJ6231-10ml(無酚紅) | NBJ4248-5ml(含酚紅) NBJ4248-10ml(含酚紅) NBJ4262-5ml(無酚紅) NBJ4262-10ml(無酚紅) | NBJ6255-5ml(無酚紅) NBJ6255-10ml(無酚紅) | NBJ4277-5ml(無酚紅) NBJ4277-10ml(無酚紅) |
NoninBio?基質膠產(chǎn)品列表
大類 | 亞類 | 貨號 | 規(guī)格 | 目錄價 | 對標康寧貨號 |
NoninBio?標準型基質膠 | 無酚紅 | NBJ6237 | 5 ml | 1530 | 康寧不含酚紅的標準型基質膠沒有5ml規(guī)格 |
10 ml | 2720 | 356237 | |||
含酚紅 | NBJ6234 | 5 ml | 1530 | 356234 | |
10 ml | 2720 | 354234 | |||
NoninBio?低生長因子基質膠 | 無酚紅 | NBJ6231 | 5 ml | 1870 | 康寧不含酚紅的低生長因子基質膠沒有5ml規(guī)格 |
10 ml | 3485 | 356231 | |||
含酚紅 | NBJ6230 | 5 ml | 1870 | 356230 | |
10 ml | 3485 | 354230 | |||
NoninBio?高濃度基質膠 | 無酚紅 | NBJ4262 | 5 ml | 2720 | 康寧不含酚紅的高濃度基質膠沒有5ml規(guī)格 |
10 ml | 5270 | 354262 | |||
含酚紅 | NBJ4248 | 5 ml | 2720 | 康寧含酚紅的高濃度基質膠沒有5ml規(guī)格 | |
10 ml | 5270 | 354248 | |||
NoninBio?類器官專用基質膠 | 無酚紅 | NBJ6255 | 5 ml | 2125 | 康寧類器官專用基質膠沒有5ml規(guī)格 |
10 ml | 3910 | 356255 | |||
NoninBio?干細胞專用基質膠 | 無酚紅 | NBJ4277 | 5 ml | 1955 | 354277 |
10 ml | 3570 | 康寧干細胞專用基質膠沒有10ml規(guī)格,因為酚紅有點雌激素,所以我們的干細胞專用基質膠沒有加酚紅 |
3 、基質膠保存、解凍、運輸和分裝?
保存:基質膠通常保存于-20 ℃的無除霜功能冰箱;
解凍:將基質膠包裝瓶埋于碎冰中(僅暴露瓶口),置于 2-8℃冰箱過夜;
運輸:干冰物流運輸;
分裝:結合每輪實驗基質膠使用量進行分裝,分裝后于-20 ℃的無除霜功能冰箱保存,避免 反復凍融。
4 、使用基質膠前需要試劑和耗材預冷嗎?
由于基質膠在高于 8 ℃的環(huán)境溫度下就會以不可逆形式聚合形成凝膠,所以在操作基質膠過 程中,試劑(培養(yǎng)液、稀釋液、細胞懸液等)和耗材(吸頭、培養(yǎng)皿、EP 管和管架等)都 要求預冷,冰上操作。
5 、基質膠顏色和狀態(tài)?
凍存狀態(tài)下,含酚紅基質膠顏色通常為淺橘紅色,不含酚紅基質膠呈現(xiàn)碎冰樣白色;解凍后, 含酚紅基質膠紫紅色。解凍后不含酚紅高濃度基質膠為半透明濃稠濁液,低濃度基質膠為近 乎透明狀液體。
6、基質膠出現(xiàn)沉淀怎么辦?
如發(fā)現(xiàn)基質膠存在少量沉淀,建議 4 ℃低速離心后使用(5000 rpm for 5 min),通常不影響基 質膠活性。
7、包被培養(yǎng)皿時,基質膠使用量?
表 2 基質膠包被培養(yǎng)皿用量指導
薄膠 Thin Gel | 厚膠 Thick Gel |
50 ul/cm2 | 150-200 ul/cm2 |
培養(yǎng)皿 Culture ware | 生長面積 Growth area(cm2) |
6-well plate | 9.6 |
24-well plate | 2.0 |
96-well plate | 0.32 |
35 mm x 10 mm dish | 11.78 |
100 mm x 20 mm dish | 58.95 |
Part II 基質膠——實操篇
1 、內(nèi)皮細胞血管生成實驗(Tube Formation Assay)
1.1 實驗目的
血管形成實驗是體外研究血管生成的經(jīng)典方法,該方法可快速確定調(diào)控血管生成的基因、 小分子或信號通路,結合鈣黃綠素(Calcein)染色和 Image J 分析工具,可以實現(xiàn)血管生成的 定量分析。
1.2 實驗步驟
1.2. 1 包被:基質膠解凍后,按照每孔 50-60 μl 的量加入預冷 96 孔板培養(yǎng)孔中(盡量避 免基質膠產(chǎn)生氣泡) ,并輕輕搖晃培養(yǎng)板,使基質膠均勻鋪于培養(yǎng)孔孔底;然后置于 37 ℃細 胞培養(yǎng)箱聚合 30 min。
1.2.2 細胞制備:將對數(shù)生長期培養(yǎng)中的 HUVEC 細胞消化,制備成 2E+5 cell/ml 懸液(計 數(shù)一定要準確)。
1.2.3 接種:細胞混勻計數(shù)后,將細胞接種至已報備培養(yǎng)孔中,每孔 100 μl ,輕輕搖勻 后,置于 37 ℃細胞培養(yǎng)箱繼續(xù)培養(yǎng)。
1.2.4 觀察:培養(yǎng) 6 h(或其他指定時間點)后,顯微鏡下觀察成管情況,同時采集照片。
1.3 注意事項
1.4.1 血管內(nèi)皮細胞成管實驗推薦使用標準型(貨號: NBJ6234)或細胞因子減少型(貨 號:NBJ6230)基質膠,膠濃度為 8-10 mg/ml 最佳。
1.4.2 體外血管形成實驗除了選好合適的基質膠之外, 內(nèi)皮細胞的狀態(tài)也極為關鍵,建 議選擇 3-5 代次的細胞進行實驗,鋪板接種前注意細胞狀態(tài)(對數(shù)生長期)并進行饑餓培養(yǎng)。 同時細胞接種數(shù)量不能過稀或者過密。
1.4 結果示例
2 、侵襲實驗(Invasion)
2.1 實驗目的
細胞侵襲實驗是體外模擬細胞主動突破物理屏障發(fā)生位置轉移能力的一種實驗技術,被 廣泛應用于各種細胞侵襲轉移能力探索研究中,結合結晶紫染色可實現(xiàn)定量分析。應用于炎 癥反應、癌癥轉移、胚胎發(fā)育、血管生成、傷口愈合、免疫反應、動脈粥樣硬化等研究領域。
2.2 實驗步驟
2.2. 1 基質膠稀釋:基質膠解凍后,將基質膠用無血清培養(yǎng)基稀釋至 1 mg/ml 左右,混勻后 冰置于上備用。
2.2.2 小室鋪膠:按照每小室 60 μl 的量將稀釋后的基質膠垂直加入預冷小室底部,不要產(chǎn)生 氣泡,然后置于 37℃細胞培養(yǎng)箱孵育 2-3 h ,使基質膠充分聚合為薄膜層。
2.2.3 基底膜水化:孵育后將小室中多余液體小心吸掉,加入 100 ul 無血清培養(yǎng)基,然后置 于 37℃細胞培養(yǎng)箱孵育 30 min ,使基底膜充分水化。
2.2.4 檢漏:小心吸出小室中液體,檢查是否有液體穿過小室進入下室中,若漏液則可用于 下游細胞接種(選做,非必須)。
2.2.5 細胞制備:消化對數(shù)生長期待檢測細胞,清洗后細胞重懸計數(shù),將細胞濃度調(diào)整至 1-10e+5 cell/ml(根據(jù)待測細胞的遷移能力強弱調(diào)整細胞密度);在 24 孔板下室加入 600 μl 含 5%-10% FBS 或趨化因子的培養(yǎng)基,然后用鑷子將 Transwell 小室置于 24 孔板內(nèi),取適量 細胞懸液(100-200 μL)加入上室,最后置于培養(yǎng)箱中培養(yǎng) 12-48 h(細胞量和時間視細胞侵襲 能力變化,結合預實驗確定);同時設置對照孔,下室添加等體積無血清培養(yǎng)基。
2.2.6 固定:在指定時間點,取出 Transwell 小室,去除培養(yǎng)液,用 PBS 浸濕的棉簽或棉花輕 輕擦拭小室內(nèi)基質膠和細胞。在 24 孔板干凈的孔中加入 600 μl 4%多聚甲醛固定液,將小室 放入固定 30 分鐘。然后棄固定液,PBS 洗滌小室內(nèi)外 1 次。
2.2.7 結晶紫染色:在 24 孔板干凈的孔中加入 600 uL 結晶紫染色液,將小室放入染色 10 分 鐘。
2.2.8 取出小室,PBS 洗滌小室內(nèi)外 3 次。適當風干后,顯微鏡下觀察定性研究;取 3-5 個 視野拍照。
2.2.9 定量分析:用 Image J 計數(shù)取平均值進行定量研究。
2.3 注意事項
2.3. 1 根據(jù)細胞大小選擇合適的 Transwell chamber 小室,常用的為 8 μm 孔徑,細胞培養(yǎng)板 有 6- ,12-和 24-孔板等,最常用的是 24 孔板。
2.3.2 接種細胞狀態(tài)和密度非常關鍵,需結合預實驗確定接種數(shù)量以及后續(xù)檢測固定染色時 間點。
2.4 結果示例
3 、皮下成瘤(Xenograft)
3.1 實驗目的
皮下成瘤實驗為腫瘤發(fā)生發(fā)展研究和腫瘤藥物開發(fā)奠定了疾病模型基礎,被廣發(fā)應用于各種 腫瘤發(fā)病機制研究。高濃度基質膠有效促進腫瘤形成,為腫瘤細胞提供合適的生長微環(huán)境。
3.2 實驗步驟
3.2. 1 選取對數(shù)生長期的細胞,細胞匯合度達 80-90%左右為宜;
3.2.2 消化細胞后用預冷的 PBS 洗兩遍, 目的為去除細胞中殘余的血清和胰酶。
3.2.3 細胞用預冷 PBS 或無血清培養(yǎng)重懸,計數(shù)并根據(jù)需求調(diào)整細胞密度。細胞懸液與高濃 度基質膠 1:1 混勻(如果細胞成瘤能力較高,基質膠終濃度可以降低)。一般皮下瘤接種的 細胞量為 1-5×10^6 個細胞/鼠,接種體積為 0.1-0.2 ml。
3.2.4 裸鼠周齡 4-6 周齡,體重 16-18 g 左右,種植部位選擇血供豐富區(qū)域,如腋下中后部;
3.2.5 從進針部位向前穿刺大約 1 cm ,進行皮下注射,針頭在皮下左右滑動幾次,以便細胞 接種成團,避免注射后細胞懸液從針眼溢出;
3.2.6 接種后正常飼養(yǎng),4-6 周成瘤,過程中檢測小鼠體重,腫瘤體積變化;最后取瘤進行 拍照成像,保存組織用于下游實驗檢測。
3.3 注意事項
3.3. 1 細胞與基質膠混勻后,需置于冰上放置,并盡快注射,避免基質膠聚合;同時低溫能 降低細胞代謝,維持細胞活力。
3.3.2 不同細胞成瘤能力也不同,所以細胞接種數(shù)量需結合預實驗確定最佳值。
3.3.3 稀釋后的基質膠濃度不可低于 4 mg/ml。
3.4 結果示例
注:上排為加基質膠組,下排為 PBS 對照組
4 基質膠塞實驗(Matrigel Plug Assay)
4.1 實驗目的
基質膠塞實驗是體內(nèi)探究血管生成的一種技術,可用于分析調(diào)控血管生成的基因、小分 子或者信號通路,結合病理染色實驗能實現(xiàn)血管生成的定性和定量檢測。
4.2 實驗步驟
4.2. 1 從-20℃或-80℃冰箱取出高濃度基質膠,將其埋于碎冰之中,置于 4 ℃冰箱過夜 解凍。
4.2.2 將 EP 管、注射器、針頭、吸管等置于 4℃或冰上預冷,避免后續(xù)基質膠操作過程 中提前聚合凝膠。
4.2.3 將 500 ul 高濃度基質膠轉移至 1.5 ml EP 管中,并添加待測藥品(小分子化合物和 蛋白等),充分混勻后置于冰上。
4.2.4 麻醉小鼠(注射阿佛丁或其他吸入式麻醉)。麻醉后剃毛刀剃出小鼠身體一側待 注射位置毛發(fā),酒精棉擦拭消毒備用。
4.2.5 在備皮處進行皮下注射,注射時速度切記不要太快,慢慢推進給藥;注射后 7-15d 形成基質膠塞,并血管化。
4.2.6 血管生成實驗結束后,麻醉處死小鼠,取出基質膠塞,置于 DMEM 中,去除基 質膠塞表面粘附的其他組織,然后于 PBS 中再次清洗。
4.2.7 圖像采集與樣本保存:清洗干凈后拍照保存,膠塞的紅色程度代表血管生成的水 平;樣本保存后,可以用于病理染色分析血管形成的組織形態(tài)。
4.3 結果示例
Akhtar N, Dickerson EB, Auerbach R. The sponge/Matrigel angiogenesis assay[J]. Angiogenesis, 2002, 5: 75-80.
5 、類器官培養(yǎng)(Organoids)
5.1 實驗目的
利用臨床來源生物標本的祖細胞或者干細胞株(例如 iPS ,ADSC 等), 以基質膠作為 三維立體培養(yǎng)支架(Scaffold),在特定細胞因子作用下,體外誘導生成的類組織微球并定義為 類器官(Organoids)。其細胞分序組織結構、遺傳物質穩(wěn)定性以及藥物反應性與供體基本一致, 在新藥研發(fā)、精準醫(yī)學、再生醫(yī)學、基礎科研等領域具有重要的應用價值和前景。
5.2 實驗步驟
5.2. 1 解凍:從-20℃或-80℃冰箱取出基質膠,將其埋于碎冰之中(瓶扣朝上),并將冰盒置 于 4 ℃冰箱過夜解凍。
5.2.2 分裝:解凍后,輕輕搖勻基質膠,并結合每次實驗基質膠需求量,分裝基質膠,保留
1 管即用,其他的分裝后立即轉移至-20 ℃無除霜功能冰箱凍存(注:盡量放置到冰箱最深 處,避免冰箱門附近放置)。
5.2.3 細胞制備:組織樣本消化、制備單細胞懸液以及計數(shù)(略)。
5.2.4 穹頂制備:將細胞沉淀(冰上預冷)用基質膠重懸并混勻(膠:細胞懸液比值大于等 于 1.5),進行點膠(Dome),點膠完成后,將培養(yǎng)板倒扣轉移至培養(yǎng)箱,37 ℃孵育 15-30 min; 然后添加適量已預熱的完全培養(yǎng)基(緩慢輕柔),置于 37 ℃ , 5% CO2 培養(yǎng)箱中孵育培養(yǎng), 每天觀察類器官生長情況,結合類器官數(shù)量等安排換液(換液時培養(yǎng)基提前預熱)、傳代或 者凍存。
5.3 結果示例
6 、干細胞培養(yǎng)(Stem cell)
6.1 實驗目的
干細胞(Stem cell)是一類具有自我更新和分化潛能的細胞,例如 iPSC ,ESC 等。通 常干細胞培養(yǎng)時需要血清和/或胚胎成纖維細胞飼養(yǎng)層的加持,但是該方法后續(xù)篩選工作耗 時,且實驗再現(xiàn)性和一致性相對較差。基質膠作為干細胞培養(yǎng)包被基質,一定程度上降低了 干細胞培養(yǎng)的繁瑣性,同時實驗結果具有更好的再現(xiàn)性和一致性。
6.2 實驗步驟(以 iPSC 為例)
6.2. 1 解凍:從-20 ℃或-80℃冰箱取出基質膠,將其埋于碎冰之中(瓶扣朝上),并將冰盒置 于 4 ℃冰箱過夜解凍。
6.2.2 分裝:解凍后,輕輕搖勻基質膠,并結合每次實驗基質膠需求量,分裝基質膠,保留
1 管即用,其他的分裝后立即轉移至-20 ℃無除霜功能冰箱凍存(注:盡量放置到冰箱最深 處,避免冰箱門附近放置)。
6.2.3 稀釋:將基質膠按照預定比例用預冷 DMEM/F12 稀釋(具體稀釋比例需結合基質膠濃 度和預實驗確定,通常稀釋倍數(shù)在 50-100 之間)。
6.2.4 包被:將稀釋后的基質加入 6 孔培養(yǎng)板(1 mL/孔)或 100 mm 培養(yǎng)皿(8 mL/培養(yǎng)皿) 。在 使用前請將培養(yǎng)皿在室溫下(37 ℃)孵育 2 小時,待基質膠聚合后,使用前小心吸出培養(yǎng)皿中 剩余的液體,盡量避免刮擦培養(yǎng)表面。
6.2.5 接種:將制備好的 iPSC 細胞懸液接種到包被后的培養(yǎng)板或培養(yǎng)皿中,輕輕搖勻細胞, 于 37 ℃ , 5% CO2 培養(yǎng)箱中孵育培養(yǎng),每天觀察細胞狀態(tài)并每天更換培養(yǎng)基。
6.3 結果示例